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临床腹水样本蛋白质分离鉴定的LC-MS/MS检测方案

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2025-10-16
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奥创检测实验室

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临床腹水是肝硬化、恶性肿瘤、感染性疾病等的重要病理产物,其蛋白质组蕴含疾病诊断、机制研究的关键信息。LC-MS/MS(液相色谱-串联质谱)作为高灵敏度蛋白质组学技术,是腹水蛋白分离鉴定的核心工具。本文系统梳理其检测方案,覆盖样本前处理、蛋白提取、质谱检测全流程,为临床及科研提供实操参考。

临床腹水样本的收集与预处理

样本收集需用EDTA/肝素抗凝管,避免凝血;采集后4℃冷藏,1小时内3000g离心10分钟分离上清(去除细胞碎片)。若无法立即处理,上清分装为100μL/管,-80℃冻存,避免反复冻融(≤3次),防止蛋白变性。

预处理需去除高丰度蛋白与脂质:腹水中白蛋白、IgG占比超60%,用MARS Human 14亲和柱(去除14种高丰度蛋白)或10% PEG6000沉淀法富集低丰度蛋白;脂质用氯仿-甲醇法去除——1体积上清+4甲醇+1氯仿+3水,涡旋后12000g离心15分钟,取上层水相(含蛋白)。

腹水蛋白质的提取与定量

蛋白提取用尿素-硫脲液(8M尿素+2M硫脲+4% CHAPS):100μL上清加500μL提取液,冰上孵育30分钟(每10分钟涡旋1次),15000g离心20分钟取上清。该液可破坏蛋白结构、增加溶解度,适合腹水蛋白提取。

定量用BCA法(不受去垢剂干扰):蛋白溶液1:5稀释,与BCA工作液(50:1)混合后37℃孵育30分钟,测562nm吸光度,以BSA标准曲线算浓度(目标≥1mg/mL)。需调整每样本蛋白量一致(如100μg/管),保证实验重复性。

蛋白质的酶解与肽段纯化

酶解前还原烷基化:加DTT(终浓度10mM)56℃孵育30分钟(还原二硫键),冷却后加碘乙酰胺(20mM)室温避光30分钟(烷基化半胱氨酸,防止复键)。

用胰蛋白酶(1:50酶/蛋白比)37℃孵育12-16小时;或先Lys-C酶解4小时再胰酶解,提高覆盖率。酶解后用C18 ZipTip纯化:甲醇活化→0.1%甲酸平衡→上样→0.1%甲酸洗涤→80%乙腈+0.1%甲酸洗脱,真空干燥后用0.1%甲酸+1%乙腈复溶。

液相色谱的肽段分离优化

采用纳升液相色谱(nano-LC),色谱柱选C18反相柱(75μm内径×25cm长,1.9μm颗粒,10nm孔径);流动相A为0.1%甲酸水,流动相B为0.1%甲酸+80%乙腈。

梯度洗脱程序:0-5min 2% B(平衡);

5-95min 2%-35% B(线性分离肽段);

95-100min 35%-95% B(洗脱强疏水肽段);

100-105min 95% B(冲洗柱子);

105-110min 回到2% B(重新平衡)。流速300nL/min,柱温35℃(保持柱效)。

MS/MS检测的参数设置

质谱仪选Orbitrap Fusion(分辨率≥70,000 FWHM),离子源为纳米电喷雾(nanoESI),喷雾电压2.0kV,毛细管温度320℃,鞘气/辅助气设为0(纳升流速无需鞘气)。

数据采集用DDA模式:一级全扫描(m/z 350-1500)分辨率70,000,AGC目标1e6,最大注入时间50ms;二级扫前20个强母离子,HCD碎裂(碰撞能量30%),分辨率17,500,AGC目标5e4,最大注入时间25ms,动态排除30s(避免重复扫描)。

质谱数据的质量控制

每批样本加BSA酶解肽段作质控,监测3指标:保留时间RSD<2%(色谱稳定)、肽段峰强度RSD<15%(信号一致)、鉴定蛋白数变异<10%(方法重复)。

质谱仪每日用ESI校准液校准,确保一级质量误差<5ppm、二级<10ppm。样本复溶后12000g离心5分钟,去除不溶物防堵柱。

蛋白质鉴定的数据库搜索

数据库选UniProt Human(无冗余),搜索引擎用MaxQuant。参数:胰蛋白酶(允许2个漏切),固定修饰为半胱氨酸羧甲基化,可变修饰为甲硫氨酸氧化,一级质量容差±10ppm,二级±0.02Da。

鉴定标准:肽段FDR<1%(目标-诱饵数据库控制),蛋白质需至少2个独特肽段(或1个肽段且score≥40),确保假阳性率<1%。

鉴定结果的验证与可靠性

关键蛋白用Western Blot验证:选特异性抗体,检测病例组与对照组腹水的蛋白表达差异,结果需与质谱一致(如质谱显示上调,WB条带应增强)。

靶向验证用PRM(平行反应监测):针对目标肽段设置离子对,定量精度达fg级,弥补DDA定性局限。若需确认细胞来源,结合免疫组化(IHC)检测腹水脱落细胞或原发病灶,验证蛋白定位。

可靠性分析需统计生物学重复相关性:3次重复的蛋白丰度Pearson系数≥0.85,鉴定蛋白数≥300种(临床腹水常规范围),动态范围≥5个数量级(覆盖高、中、低丰度蛋白)。

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